His標(biāo)簽由于其分子量小、與金屬離子結(jié)合能力強(qiáng)以及在變性條件下也可保持與介質(zhì)結(jié)合的特性，已成為常用的親和標(biāo)簽。固定化金屬離子親和層析(IMAC)原理為：暴露在蛋白質(zhì)表面的某些氨基酸側(cè)鏈(主要是His，及少量的Cys和Trp)，可與過渡金屬離子之間發(fā)生特定的可逆性相互作用，從而實(shí)現(xiàn)對(duì)蛋白的分離純化。金屬離子通常為Zn2+、Ni2+、Cu2+或Co2+，如今用Ni2+固定化金屬離子親和層析已成為純化組氨酸標(biāo)簽蛋白的標(biāo)準(zhǔn)方法。蛋白質(zhì)/肽與固定化金屬離子相互作用的強(qiáng)度取決于氨基酸側(cè)鏈的類型、數(shù)量和空間分布，以及所使用的金屬離子的性質(zhì)。
常見的Ni螯合方式：
Ni填料在獸用亞單位疫苗的應(yīng)用
基因工程亞單位疫苗，在表達(dá)載體序列中加入His-tag標(biāo)簽以達(dá)到快速層析純化獲得目標(biāo)蛋白，發(fā)酵培養(yǎng)后通過金屬螯合親和層析填料Ni Chromstar FF或Ni Chromstar Excel一步層析純化即可獲得較高純度的目標(biāo)蛋白，經(jīng)Puredex G-25 M或UF/DF進(jìn)行緩沖液置換即可進(jìn)行制劑配苗。
典型案例：百林科Ni填料在重組亞單位疫苗的應(yīng)用：
某獸用亞單位疫苗案例
由圖可知，發(fā)酵后菌體破碎澄清后經(jīng)一步Ni填料親和層析純化后，目標(biāo)蛋白純度高，后續(xù)經(jīng)濃縮與換液后即可進(jìn)行后續(xù)制劑配苗。
典型案例：百林科Ni填料在重組膠原蛋白的應(yīng)用：
大腸表達(dá)的重組膠原蛋白應(yīng)用案例
由圖可知，重組膠原蛋白經(jīng)一步Ni Chromstar FF純化后可得較高純度蛋白洗脫液，后續(xù)經(jīng)Puredex G-25 M脫鹽換液后再進(jìn)行離子交換層析精純可得高純度重組膠原蛋白。
不同Ni螯合方式純化效果對(duì)比(另一重組膠原蛋白)
1、Ni Chromstar FF與Ni Chromstar Excel均可用于純化重組膠原蛋白；
2、Ni Chromstar Excel洗脫純度明顯較Ni Chromstar FF高，對(duì)于雜質(zhì)的去除有顯著的改善效應(yīng)。
鑒于以上情況，Ni親和填料在各種重組蛋白項(xiàng)目上應(yīng)用較多，而實(shí)驗(yàn)中也會(huì)經(jīng)常遇到各種問題，該如何解決吶？以下匯總了常見問題以及對(duì)應(yīng)解決方法：
01 His標(biāo)簽蛋白與親和介質(zhì)不結(jié)合
① His標(biāo)簽未翻譯表達(dá)
解決思路：
Ø 使用Western blot方法檢測(cè)His標(biāo)簽是否表達(dá)
Ø 重新構(gòu)建目的蛋白分子，改變插入His標(biāo)簽的位置(C端或N端)
② His標(biāo)簽暴露不充分
解決思路：
Ø 向樣品中加入一定量變性劑(如：3～8 M尿素，3～6 M鹽酸胍等)，再上樣純化
Ø 重新構(gòu)建目的蛋白分子，適當(dāng)增加組氨酸基團(tuán)個(gè)數(shù)，或在His標(biāo)簽與目的蛋白之間加入一段Linker
02 His標(biāo)簽蛋白純化后純度低
① 介質(zhì)的離子交換作用，導(dǎo)致了非特異結(jié)合
解決思路：
Ø 在平衡液、樣品、洗脫液中，加入0.5 M NaCl，屏蔽介質(zhì)的離子交換作用
② 雜蛋白也能與金屬離子結(jié)合
解決思路：
Ø 調(diào)整樣品與介質(zhì)的結(jié)合條件，比如預(yù)先在樣品及平衡液中加入10～50 mM咪唑，屏蔽與介質(zhì)弱結(jié)合的蛋白
Ø 洗脫過程采用梯度洗脫方法，摸索最佳純度條件
Ø 嘗試其他金屬離子螯合親和層析介質(zhì)
Ø 在目的蛋白分子上額外構(gòu)建一個(gè)蛋白標(biāo)簽，如：GST標(biāo)簽，兩步純化目的蛋白，或銜接其他純化方法進(jìn)一步純化
③ His標(biāo)簽蛋白被降解
解決思路：
Ø 細(xì)胞破碎過程中釋放的蛋白酶可能會(huì)降解目的蛋白，導(dǎo)致帶有His標(biāo)簽的小片段產(chǎn)生，形成產(chǎn)品相關(guān)雜質(zhì)，可以在處理樣品過程中加入一定量蛋白酶抑制劑
Ø 如果目的蛋白自身不穩(wěn)定，會(huì)發(fā)生降解，則需要摸索維持目的蛋白穩(wěn)定的最佳條件，包括溫度、緩沖液成分和操作時(shí)間等
03 His標(biāo)簽蛋白無法洗脫
① 目的蛋白與介質(zhì)結(jié)合能力過強(qiáng)
解決思路：
Ø 進(jìn)一步增加洗脫咪唑濃度，或同時(shí)適當(dāng)降低pH值
Ø 通過脫落金屬離子，進(jìn)行洗脫，可用pH值3.5條件或EDTA進(jìn)行洗脫
② 目的蛋白沉淀在層析柱內(nèi)
解決思路：
Ø 摸索維持目的蛋白穩(wěn)定的最佳條件，包括溫度、緩沖液成分和操作時(shí)間等
Ø 適當(dāng)降低上樣量
Ø 用變性劑洗脫，如8 M尿素或6 M鹽酸胍
04 層析介質(zhì)變色
① 介質(zhì)長(zhǎng)期使用，出現(xiàn)白色
解決思路：
Ø 如果介質(zhì)長(zhǎng)期使用，或單次使用上樣量較大時(shí)，會(huì)導(dǎo)致介質(zhì)金屬離子脫落，從而導(dǎo)致介質(zhì)變白，可通過介質(zhì)再生解決
Ø 如果介質(zhì)表面結(jié)合了大量目的蛋白，在純化過程中，會(huì)略顯白色，洗脫后顏色會(huì)恢復(fù)，屬于正?，F(xiàn)象
② 介質(zhì)在純化過程中，出現(xiàn)棕色
解決思路：
Ø 介質(zhì)在純化過程中變成棕色，主要是受緩沖液或樣品中還原劑的影響，可以選擇去掉還原劑成分，或者使用Ni Chromstar Excel介質(zhì)
③ 介質(zhì)長(zhǎng)期使用過程中，出現(xiàn)黃色
Ø 介質(zhì)在使用過程中，會(huì)積累非特異性吸附的雜質(zhì)，包括蛋白、色素等。同時(shí)在層析柱頂端也會(huì)積累沉淀蛋白，長(zhǎng)期使用后，就會(huì)出現(xiàn)介質(zhì)頂端發(fā)黃的現(xiàn)象。此時(shí)，往往伴隨著介質(zhì)載量降低、柱效降低、柱壓變大等情況?？赏ㄟ^在位清洗方法，系統(tǒng)的對(duì)層析柱進(jìn)行清洗，解決這一問題，并建立合理的介質(zhì)壽命維護(hù)方法
百林科層析填料家族
多種填料均可試用
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